-
组织病理切片的制作过程
1
、
取材
取材的好坏，直接影响切片的质
量。首先要有一把锋利的取材刀，在切割组织时要
避免取材刀来回拖拉，切取的组织块厚
薄要均匀，一般厚度以
0.2
～
0.
3cm
为适，较容
易发脆的组织如甲状腺、肝脏、血块、淋巴结
、大块癌组织等可适当厚一点，而脂肪组
织、肺组织、纤维性肿瘤、平滑肌瘤等致密的或
试剂不易渗入的组织应取薄一些；淋巴
结应修掉两侧球冠，并尽量剔除周围的脂肪组织。
在取材中还应十分注意组织内是否有
缝线或骨组织，
如碰到不可
避免的钙化组织，
应与技术室讲明，
在切取纤维组织、
肌肉、
组织、
胃肠道时，
应注意纤维及肌肉的走向，
取材时尽可能按与纤维平行走向切取为佳。
具体要求如下：
(1)
材料新鲜：取材组织愈新鲜愈好，动物组织在处死后迅速固定，
以保证原有的形
态学结构。
(2)
组织块的大小：
所取组织块较理想的体
积为
2.0cm
×
2.0cm
×
0.3cm
，
以使固
定液能
迅速而均匀地渗入组织内部，但根据制片材料和目的不同，组织块的较理想体积也
不同，
如制作病理外检、科研切片，其组织块可以薄取
0.1<
/p>
～
0.2cm
即可，这样可以缩短固定脱
水透明的时间，若制作教学切片厚取
0.3
< br>～
0.5cm
，这样可以同一蜡块制作出较多的教学
切片。
(3)
勿挤压组织块
:
切取组织块用的刀剪要锋利，
切割时不可来回锉动。
夹取组织时切
勿过紧，以免因挤压而使组织、细胞变形。
(4)
规范取材部位
:
要准确地按解剖部位取材，
病理标本取材按照各病变部位、
< br>性质的
不同，根据要求规范化取材。
(5)
选好组织块的切面
:
根据各器官的组织结构，决定其切面的走向。纵切或横切往往
是显示组织形态结构的关键，如长管状器官以横切为好。
(6)
保持材料的清洁
:
组织块上如有血液、污物、粘液、食物、粪便等，可用水冲洗干
净后再放入固定液中。
(7)
保持组织的原有形态
:
新鲜组
织固定后，或多或少会产生收缩现象，有时甚至完全
变形。为此可将组织展平，以尽可能
维持原形。
2
．固定
(1)
小块组织固定法：这是最常用
的方法，从人体或动物体取下的小块组织，须立即置入
液态固定剂中进行固定，
通常，
标本与固定液的比例为
1:4
～
20
，
但组织块不宜过
大过厚，
否则固定液不能迅速渗透。故取组织块的大小一般为
2
.0cm
×
2.0cm
×
0.3cm
。
(2)
注射、灌注固定法：某些组织块由于体积过大或固定液极难渗入内
部，或需要对
整个脏器或整个动物体进行固定。
这时宜采用注射
固定或灌注固定法。
将固定液注入血管，
经血管分支到达整个组
织和全身，从而得到充分的固定。
(3)
蒸汽固定法：比较小而厚的标本，可采用锇酸或甲醛蒸汽固定法。如血液涂片，<
/p>
则应在血片未干燥前采用锇酸或甲醛蒸汽接触固定。
最常用的固定液有
10%
甲醛固定液
和
95%
乙醇固定液。
3
．脱水
脱水透明标本经过固定和冲洗后，
组织中含有较多的水分，
必须将组织块内的水分置
换出来，这一过程叫做脱水。无论是用石蜡
切片，
还是用火棉胶切片，
都必须除去组织中
< br>所含水分，
因含水组织与石蜡、
火棉胶等包埋材料不相容
，
常用的脱水剂为一系列不同浓
度的乙醇。
步骤：将固定的组织取出，依次经过：
50%
酒精（已保存在
70
％
的酒精中可省略）→
70%
酒精→
80
%
酒精→
90%
酒精→
95%
酒精→
100%
酒精（
两次）
，每级
35
－
< br>45
分钟，
100%
酒精第二次
可适当缩短时间。
丙酮也是一种脱水能力很强的脱水剂，
但因其脱水能力很强，
对组织有剧烈收缩作用，
在制作科研、教学切片时一般不用该试剂。因乙醇、丙
酮等不溶于石蜡，还要经过一个能
溶于石蜡的溶剂替代过程称为透明。常用的透明剂有二
甲苯、三氯甲烷、水杨酸甲酯等。
酒精浓度越高组织越容易变脆，
时间不能太长。
每次从低浓度更
换到高浓度的酒精时，
要把组织块用吸水纸吸干。
4
．浸蜡、包埋
(1)
使石蜡浸入组织中，取代组织
中含有的透明剂。
(2)
包埋：将浸蜡后的组织置于融化的固体石蜡中，石蜡凝固后，组织即被包在其中，
称蜡块，此过程称为包埋。
5
．切片和贴片
(1)
修整蜡块：可视其组织的大小
，在组织边缘约
0.1
～
0.2cm<
/p>
处，切去余蜡部分，否
则易造成组织皱缩不平。
< br>
(2)
准备好切片用具：切
片刀、毛笔、眼科镊子（弯）
、漂烘温控仪
< br>(3)
安装蜡块：将
修好的蜡块安装在金属或木制持蜡器
上。
-
-
-
-
-
-
-
-
-
上一篇：病理切片的结果分析方法
下一篇：与人为善作文800字 六篇