-
?
1994-2010
China
Academic
Journal
Electronic
Publishing
House.
All
rights
reserved.
45
卷
4
期
2005
年
8
月
微生物学报
Acta
Microbiologica Sinica
Vol. 45
August
No. 4
2005
基金项目
p>
:
湖南省农业生物技术重大专项研究
(20
04NK1003)
作者简介
:
李宗
军
(1967
-
)
,
男
,
湖南临湘人
,
副教授
,
博士
,
研究方向为食品微生物与生物技
术。
Tel :86-731-4617007 Fax :86-731-4617013
E-mail :lizongjun @yahoo. com. cn
收稿日期
:2004-12-02
,
修回日期
:2005-03-22
超高压处理对微生物生理特性的影响
李宗军
1
徐建兴
2
(1
湖南农业大学食品科技学院
长沙
410128)
(2
中国科学院生物物理研究所
北京
100101)
摘
要
:
p>
单核增生李斯特菌
(
Listeria
monocytogenes
)NCTC 11994
和大肠杆菌
(
Escherichia coli
)ATCC 80739
经高压处理
,
其生理特性发生了深刻
的变化
,
主要表现是
:400MPa
以上的压力处理
10min
,
微生物数量下
降
7
个对数单位
,
压力处
理还会导致细胞内
pH
值的变化
p>
,
使膜电位下降
,
细胞内钾流失
,ATP
浓度降低。
关键词
:
超高压
,
微生物
,
生理特性
中图分类号
:Q935
文献标识码
:A
文章编号
:000126209 (2005)
超高压处理被认为是一种新的冷杀
菌方式
,
可
以应用于食品的保鲜
[1
~
3 ]
。不同的微生物对压力具
有不同的抗
性
,
微生物细胞的存活率与所采用的压
力大小有直接关系
,500
~
700MPa
能杀死细菌、酵母
和霉菌的营养细胞
,
但微生物的孢子具有更强的抗
性
[4
~
6
]
。高压处理可能会引起微生物形态、细胞膜、
细胞壁、生物化学反应和遗传物质的改变
[7 ,8 ]
。细胞
膜的变化可能是压力引起微生物死亡最主要的原因
之一
[9 ,10 ]
。了解微生物的压力致死机理可以帮助我
们有效地将这一技术应用于食品保鲜与加工过程
中
[11 ]
。本文选择食品加工中常见的单核增生李斯
< br>特菌和大肠杆菌作为革兰氏阳性和阴性的代表
,
对
它们的压力反应进行比较
,
旨在明晰压力处理对数
期细胞悬液
< br>,
活细胞总数、细胞体积、细胞内
pH
值、
细胞内钾离子浓度等生理特性的
变化
,
从而为微生
物的压力致死机制寻找理论依据。
1
材料和方法
1
1
1
材料
1
1<
/p>
1
1
1
菌种
:
单核增生李斯特菌
(
Listeria
monocytogenes
) NCTC 11994
由英国巴斯大学友情提
供
,
大肠杆菌
(
Escherichia coli
)ATCC 80739
购自中国
科学院微生物研究所。
1
1
1
1
2
主要试剂和仪器
:
< br>苯甲酸
(
羧基
14 C)
、右旋糖
苷
(
羧基
14
C)
、
(3 H)
菊粉、
4-3 H-
溴化苯磷酸、
p>
ATP
、尼
日利亚菌素等购自
Sigma
公司<
/p>
;
蛋白质和
ATP
分析
试剂盒购自南京建成生物工程公司。
Facscan
流式
细胞仪
(
美国
Beckman
公司
) 625
型荧光测定仪
p>
(
上
海精密仪器一厂
) M5
型原子吸
收光谱仪
(
美国
Thermo
公司
)
EPICS XL
液体闪烁仪
(
美国
Beckman
Coulter
公司
)
高速离心机
(
美国
Beckman
公司
)
。
1
1
2
压力处理
压力处理前两个菌株经相同的活化处理
,
于
37
℃、营养肉汤中培养
18h
,
直至培养物浓度大约为
5
×
108cfuPmL
,
保存在同一条件下备用。单核增生李
斯特菌或大肠杆菌对数后期的培养物用
100mmolPL
磷酸盐
(pH710)
或柠檬酸盐缓
冲溶液按
1
∶
5
进行稀
释
,
每一个稀释度的细胞悬液
,
取
750mL
封入灭菌
的聚乙烯薄膜袋中备压。每一个稀释度的细胞悬液
在
10L
的压力斧中
,150
~
600MPa
、
20
℃处理
10min
。
压力处理对细胞存活性的影响按国家标准测定菌落
总数。
1
1
3
细胞大小的测定
用
Facscan
流式细胞仪测定细
胞大小的变化
,
将
100
μ
L
的细菌悬液用缓冲溶液稀释到
1mL
,
在
488nm
下进行分析。
1
1
4
生理分析用细菌悬液的制备
经压力处理的单核增生李斯特菌或大肠杆菌细
胞悬液
,13000
×
g ,30min
离心
,
沉淀重新悬浮在
6mL
上清夜中
,
目的是使细胞悬液的平均蛋白质浓度维
持在
10mgPmL
左右
,
蛋白质用
FoLin-
酚法
[12 ]
进行测
定
(
以牛血清蛋白做标准
)
。两种细菌的细胞悬液分
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别被用于细胞体积、
pH
值、膜电位、钾离子浓度、腺
嘌呤核苷酸的测定。
1
1
5
细胞体积的测定
在
2mL
蛋白质浓度为
10mgPmL
的细胞悬液中
加入
< br>100
μ
L ,37kbq
的
右旋糖苷
(
羧基
14 C)
和
20
μ
L
,
74bq
的
3 H2O ,
试样混合后
, 25
℃
, 80rPmin ,
培养
10min
。分别取
300
μ
L
加入含有
100
μ
L
,1molPL
高氯
酸和覆盖有<
/p>
300
μ
L 508 V70
型硅树胶
(
密度为
11
03)
的
Eppendoff
管中。经
13000
×
g ,15min
离心后
,
用液
体闪烁仪分别测定上清夜和沉淀中放射标记探针的
强度。
1
1
6
细
胞内
pH
值的测定
单核增生李斯特菌和大肠杆菌细胞内
pH
值用
荧光探针
BCECF [ 2 ,7- bis-
(2-carboxyethyl) -5- (and-6)
carboxyfluorescein ]
,
采用
625
型荧光测定仪按
Booth
的方法
[13 ]
进行分析。
1
1
7
膜电位的测
用放射探针
3 H- TPP+
测定细胞悬液的膜电位。
将
100
μ
L
,185kbq
的
3 H- TPP+
加入到蛋白质浓度为
10mgPmL
的细胞悬液中
,
同时加入
100
μ
L
,
终浓度为
10mmolPL
没有标记的
TPP+
,
以阻止放射性探针在
细胞内的非专一性结合。
25
℃
,80rPmin
,
培养
10min
后
,13000
×
g ,10min
离心收集上清和
沉淀
,
用液体闪
烁仪测定放射活性。数据按
Booth
的方法
[13 ]
进行分
析。
1
1
8
钾浓度的测定
用原子吸收光谱仪测定细胞内钾的浓度。
10mL
细胞悬液加入到含有
2mL
508 V70 (
密度
1103)
硅树胶的离心管中
,13000
×
g ,
离心
30min
。沉淀被
重新溶解在
2mL 114molPL
的
H2 SO4
中
,120
℃
,
离子
<
/p>
化
4h
。用含有
6mmolPL CsCl
的
011molPL H2
SO4
分别
按
1
∶
25
和
1
∶
50
对沉淀和上清液进行稀释
,
钾浓度
p>
在
76615nm
处测定。
1
1
9
ATP
的测定
在最佳条件下
,
一个光子可以产生一个
ATP
分
子。
1mL
细胞悬液经
13000
×
g ,5min
离心后
,
沉淀用
1mL
p>
无菌去离子水重新溶解。取
100
μ
L
加入到含有
100
μ
L
核苷酸的
4mL
计数瓶中
,
向生物计数器的计
数
瓶中注入
100
μ
L
纯的荧光素
-
荧光素酶试剂
,
反应
立即被启动
,
用生物计数仪测定反应启动后
10
~
30s
内的光子数。在此条件下
,
细胞内的
ATP
在
2
~
p>
200pmol
内与测定的光子数成线性关系。
1
1
10
微生物膜囊的准备
微生物细胞膜囊按下列方法进行制备
, 1mL
OD
660 = 100
的细胞悬液用
1mL
含有
215mmolPL
MgCl2
的
50mmolPL
,pH710
的
PIPES
(
哌嗪
-N
,N
′
-
二乙
基磺酸钠
, Piperazine-N ,
N
′
- bis ( 2-ethanesulfonate
) ,
PIPES)
缓冲溶液稀释
,
细胞用超声波进行破碎
,
振幅
为
26
μ
m
,
处理
10min
(
处理
15s
,
冷却
45s)
。用
50mL
含有
215mmolPL MgCl2
的
50mmolPL ,pH710
的
PIPES
缓冲溶液进行稀释
,7700
×
g
低速离心去除细胞碎
片。收集上清的顶部
2P3 ,543000
×
g
进行高速离心。
沉淀重新悬浮在
500uL
含有
215mmolPL MgCl2
的
50mmolPL ,pH710
的
PIPES
缓冲溶液中
,
内外膜囊被
快速冷冻
,
并保存在液氮中备用。膜囊中蛋白质浓
度用
Lowry
法进行测定。
2
结果和分析
2
1
1
超高压对单核增生李斯特菌和大肠杆菌存活
性的影响
单核增生李斯特菌和大肠杆菌细胞在柠檬酸和
磷酸缓冲溶液中经
10min
,150
~
600MPa
不同压力处
理后
,
残存菌数见表
1
。压力小于
p>
150MPa
时
,
对大
<
/p>
肠杆菌影响不大
,
而低于
200MPa
对单核增生李斯
特菌的生存几乎没有影响。随着压力的增加
,
微生
物的残存活细胞数急剧下降。经相同压力处理
,
柠
檬酸缓冲溶液中的活细胞数明显低于磷酸缓冲溶
液。大肠杆菌比单核增生李斯特菌对压力更为敏感。
表
1
超高压对微生物存活性的影响
Table 1
Effect of high
hydrostatic pressure on viability of microorganism
Microorganisms Buffer
Pressure
PMPa
Cell enumeration
P(cfuPmL)
Listeria monocytogenes
Sodium citrate Control 2186
×
108
200 3177
×
108
275 2143
×
105
325 3164
×
104
400 < 10
Phosphate Control 2186
×
108
200 2185
×
108
350 8174
×
106
425 3112
×
103
600 < 10
Escherichia coli
Sodium
critrate Control 2170
×
108
150 2165
×
108
200 2133
×
107
275 1186
×
104
350 < 10
Phosphate Control
2170
×
108
150
2142
×
108
250
6173
×
106
325
1114
×
105
400 <
10
522
微生物学报
Acta Microbiologica Sinica
2005 , Vol. 45 No. 4
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2
1
2
细胞体积的变化
结果
(
表
2)
显示
,
对于单核增生李斯特菌
,
压力
引起细胞体积
的变化与缓冲溶液有关
,
在柠檬酸缓
冲溶液中
325MPa
以下的压力处理体积变化不大
;
但在磷酸缓冲溶液中
200MPa
压力处理才不会引起
细胞体积的改变
,
当压力增加到
600MPa
时
,
细胞体
积增大了
5
倍
,
显微镜下可见部分细胞裂解。大肠
杆菌在柠檬酸和磷酸缓冲溶液中
,
分别用
400MPa
和
425MPa
以下的压力处理
,
细胞体积都没有显著
变化
,
未见细胞裂解现象。
表
2
高压处理引起的微生物细胞体积的变化
Table 2
Cell volume changes
of microorganisms in response to high
hydrostatic pressure treatment
Microorganisms Buffer
Pressure
PMPa
Cell volume
P(
μ
LPmg Protein)
Listeria monocytogenes
Sodium citrate Control 1124
±
0107
200 1118
±
0103
275 1146
±
0112
325 1132
±
0107
400 1169
±
0111
Phosphate
Control 1118
±
0104
200 1123
±
016
350 1167
±
0103
425 1157
±
__________0111
600 6108
±
0113
Escherichia coli
Sodium
citrate Control 1136
±
0106
150 1125
±
0107
200 1136
±
0171
275 1151
±
0105
350 1148
±
0106
Phosphate Control 1122
±
0114
150 1118
±
0112
250 1116
±
0121
325 1123
±
0114
400 1144
±
0105
2
1
3
pH
值的变化
未经处理的单核增生李斯特菌悬液在磷酸缓冲
溶液中能保持
014
个
pH
值单位的
pH
值梯度
,
压力
处理会引起
pH
梯度的下降。在柠檬酸缓冲溶液中
即使经
325MPa
压力处理
,
也能保持
015
单位的
pH
-
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